水稻细菌性、真菌性和病毒性疾病严重威胁粮食生产与安全。现有检测方法(如传统培养、qPCR、免疫学方法等)存在依赖专业设备、耗时、成本高或存在交叉反应等缺陷,无法满足田间即时检测(POCT)的需求。
上海交通大学研究团队开发了一种无需PAM序列限制?的环介导等温扩增偶联CRISPR/Cas12a检测新方法(Cas-PfLAMP),并结合侧流层析试纸条,用于水稻白叶枯病菌、水稻条纹病毒和水稻黑条矮缩病毒的快速、高灵敏、高特异且现场可视化诊断。核心技术:Cas-PfLAMP平台
1.原理:
PAM-free LAMP扩增:为避免CRISPR/Cas12a系统对PAM序列(如TTTN)的严格依赖,本研究在LAMP引物(FIP)的F2与F1c连接区(Linker region)预插入了一个TTTT PAM序列,使得扩增产物天然包含可被Cas12a识别的PAM位点。这种“PAM-free”设计极大地提升了方法的通用性和灵活性。
CRISPR-Cas12a检测:利用设计好的特异性单链向导RNA引导FnCas12a蛋白识别并切割含PAM位点的LAMP扩增产物。此过程激活Cas12a的反式切割(trans cleavage)活性,无差别切割反应体系中的?单链DNA荧光报告探针。
结果判读:开发了荧光实时监测和侧流层析试纸条(LFS)两种可视化方案。
荧光法:使用FAM-淬灭基团标记的报告探针,阳性结果释放荧光。
试纸条法(LFS):使用FAM-生物素双标记的报告探针,切割后产物在试纸条上显示检测线(T线),结果直观可视,无需任何仪器。
其中,使用的LFS是来自沃博生物warbio的CRISPR Cas12/13 HybriDetect试纸条,货号JY0301。
2.平台优势:“双保险”特异性:结合了LAMP引物(识别6个位点) 和CRISPR sgRNA特异性识别的双重精准识别机制,有效降低了传统LAMP因非特异性扩增导致的假阳性。
操作简便:全程恒温反应(LAMP:65°C;CRISPR/Cas12a切割:37°C),可使用便携式设备(如智能保温杯)加热,非常适合田间操作。
快速核酸提取:配套使用商业化固相核酸提取试剂盒,无需研磨叶片,5分钟内即可完成大批量样品处理。
性能评估
1.灵敏度:使用标准质粒作为校准品进行测试。对于水稻白叶枯病菌(XOO),检测限为9 拷贝/反应。对于水稻条纹病毒(RSV)和水稻黑条矮缩病毒(RBSDV),检测限均低至3 拷贝/反应。当结合试纸条(LFS)读数时,灵敏度略降为9 拷贝/反应。灵敏度主要得益于LAMP的高效扩增和Cas12a反式切割的信号级联放大。
2.特异性:对包括其他黄单胞菌属细菌、多种水稻病毒在内的总计25种相关病原菌/病毒菌株进行交叉反应测试。 结果显示,三个Cas-PfLAMP检测体系均无交叉反应,特异性高达100%,仅对各自的目标病原体产生阳性信号。
3.现场样本验证:从上海交通大学闵行校区水稻田中采集14份叶片样本,利用集成了固相提取、便携加热和LFS试纸条的完整现场平台进行检测。操作全程仅需约60分钟(样品间并行处理)。检测结果与实验室传统PCR/RT-PCR和LAMP验证结果完全一致,证明了该平台在实际田间应用中的可靠性和实用性。
结论与意义
本研究成功构建了一个名为Cas-PfLAMP的检测平台。该平台的核心创新点在于通过改造LAMP引物“预埋”PAM序列,突破了CRISPR检测对靶标序列天然PAM位点的依赖性。结合开发的全流程现场检测平台(提取→扩增→试纸条判读),该系统实现了对水稻重要病原体的快速(~50-60分钟)、超灵敏(<10 拷贝)、高特异且无需专业设备的现场诊断。这一平台不仅能有效应用于水稻病害监测,其“PAM-free”设计理念也可扩展至其他动植物病害及各类核酸即时检测领域。
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货号 |
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JY0301 |
CRISPR Cas12/13 HybriDetect试纸条 |
50T |
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JY0308 |
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50T |